Cerisier (Prunus spp.) – La tache foliaire

Cause Blumeriella jaapii (anciennement Coccomyces hiemalis), un champignon.

La maladie est particulièrement sévère sur les cerises acides, mais attaque également les cerises douces dans l’ouest de l’Oregon et dans l’État de Washington. Il a été rarement trouvé dans les zones arides à l’est de la chaîne des Cascades. C’est particulièrement un problème dans les vergers nouvellement plantés qui ne sont pas gérés pour la pourriture brune. Les pertes de rendement et de qualité des fruits qui en résultent sont associées à un affaiblissement de l’arbre à la suite de la défoliation au début de l’été. La défoliation précoce retarde l’acclimatation des bourgeons floraux à de basses températures en hiver, ce qui entraîne une diminution de la floraison et de la fructification pendant 2 ans.

Le champignon hiverne sur des feuilles de cerisier infectées tombées et produit au printemps un grand nombre d’ascospores. Les courants d’air et la pluie déplacent les spores vers des feuilles saines. Au printemps, avec l’humidité, ils initient de nouvelles infections sur les jeunes feuilles à travers les stomates. Une fois dépliées, les feuilles sont sensibles tout au long de la saison de croissance, mais leur sensibilité diminue avec l’âge.

Les nouvelles lésions produisent plus de spores, qui peuvent infecter un feuillage sain chaque fois qu’il pleut au printemps. Moins de cycles d’infection se produisent dans la PNW par rapport aux zones de production du Midwest telles que le Michigan. Les autres hôtes comprennent l’abricot, la cerise amère et la prune.

Symptômes Sur les feuilles de cerisier aigre, des taches diverses et colorées se développent sur la surface supérieure. La tache ou la lésion s’agrandit rapidement, devenant brune ou violette, et meurt du centre vers l’extérieur. Les taches infectées sont irrégulières ou rondes et se produisent sur toute la surface des feuilles. Les taches individuelles ne deviennent jamais grandes. Ils fusionnent pour tuer de grandes zones de la feuille. Le développement des taches précède le jaunissement et la chute des feuilles. La zone adjacente à la tache peut rester verte tandis que le reste de la feuille devient jaune (effet « île verte »). Le tissu foliaire malade peut se séparer du tissu sain, se laisser tomber et donner à la feuille un aspect de trou de pied.

Sur les feuilles de cerisier, les taches sont souvent plus grandes et presque circulaires. Des masses de spores fongiques de couleur crème (acervulii) apparaissent sur la surface inférieure des feuilles associées aux taches sur les cerises douces et aigres. Sur les tiges des fruits, les infections ceinturent parfois la tige pour provoquer une chute des fruits. Bien que les infections se produisent sur les fruits, elles sont moins fréquentes que sur le feuillage.

Contrôle culturel

• Ratisser et détruire les feuilles infectées. Les feuilles peuvent être compostées si elles se décomposent complètement avant le printemps.
• Utilisez toute pratique qui encourage la décomposition des feuilles avant le débourrement printanier, comme la tonte ou le battement.
• Appliquer de l’urée sur les feuilles après la chute des feuilles en automne pour améliorer la décomposition des feuilles mortes.

Lutte chimique Appliquer un fongicide à la chute des pétales, à la chute des écailles et 2 semaines plus tard. Les applications post-récolte sont utiles les années humides. Faites pivoter ou mélangez des matériaux de différents groupes avec différents modes d’action pour empêcher le développement de souches résistantes. Limitez les demandes d’un groupe particulier à deux (2) demandes ou moins par année. Des champignons résistants aux fongicides des groupes 3 et 7 ont été détectés au Michigan. La sélection des produits pour la rotation et / ou le mélange doit tenir compte des fongicides du groupe 7 lorsqu’ils sont utilisés par l’irrigation comme nématicide. Un programme de prévision est disponible au Michigan pour aider les applications de temps. Des tests dans l’ouest de l’Oregon montrent que le programme est utile à des températures plus élevées.

• Le captan bonide 50 WP peut être utilisé dans les jardins familiaux à raison de 1 à 1,5 cuillère à soupe / gal d’eau. H
• Bravo Weather Stik à 3 à 4,1 pintes / A. Ne pas appliquer après la coupe, mais peut être utilisé après la récolte. Contrôle généralement excellent. Fongicide du groupe M5. rentrée de 12 heures.
• Captan 80 WDG à 1,9 à 2,5 lb /A. Les applications peuvent être faites le jour de la récolte. Généralement bon contrôle. Fongicide du groupe M4. rentrée 24 heures.
• CaptEvate 68 GT à 3.75 lb / A. Peut être utilisé le jour de la récolte. Fongicide du groupe 17 + M4. rentrée 24 heures.
• Cueva à 0,5 à 2 gal/A. Peut être utilisé le jour de la récolte. Fongicide du groupe M1. rentrée de 4 heures. O
• Eagle 20 EW à 2 à 3 oz liq/100 gal d’eau pour les vergers domestiques ou l’utilisation paysagère. Peut être appliqué jusqu’au jour de la récolte. Fongicide du groupe 3. rentrée 24 heures.
• Echo 720 à 3,1 à 4,1 pintes/A. Ne pas appliquer après la fente. Fongicide du groupe M5. rentrée de 12 heures.
• Silex Extra de 2,5 à 3,8 oz/A. Ne pas appliquer dans les 1 jour suivant la récolte. Les raisins Concord peuvent être blessés s’ils sont pulvérisés accidentellement. Fongicide du groupe 11. rentrée de 12 heures.
• Indar 2F à 6 fl oz/A plus un agent mouillant. Généralement bon contrôle. Fongicide du groupe 3. rentrée de 12 heures.
• Luna Sensation à 5 à 7,6 fl oz /A. Ne pas utiliser dans les 1 jour suivant la récolte. Ne pas utiliser si déjà utilisé pour la pourriture brune. Fongicide du groupe 7 + 11. rentrée de 12 heures.
• Merivon à 4 à 6,7 oz liq/A. Ne pas utiliser avec des produits à base d’EC ou d’huile. Seuls les tensioactifs non ioniques peuvent être utilisés dans les 14 jours suivant la récolte. Peut être utilisé le jour de la récolte. Ne pas utiliser si déjà utilisé pour la pourriture brune. Fongicide du groupe 7 + 11. rentrée de 12 heures.
• Ortho MAX Contrôle des maladies du jardin à 3,75 cuillères à café / 4 gal d’eau. H
• Vierge à 10,5 à 14,5 oz / A. Peut être utilisé le jour de la récolte. Ne pas utiliser si déjà utilisé pour la pourriture brune. Fongicide du groupe 7 + 11. rentrée de 12 heures.
• Procurez-vous 480 SC à 10 à 16 oz liq/A. Ne pas appliquer dans les 1 jour suivant la récolte. Fongicide du groupe 3. rentrée de 12 heures.
• Les fongicides à base de propiconazole sont homologués. Dans la vallée de la Willamette, des feuilles vertes plus petites et plus profondes ont été mesurées sur des cerisiers ‘Royal Ann’ traités avec une application diluée à 3 oz/A. fongicides du groupe 3. rentrée de 12 heures.Pare-chocs
  • 41.8 EC à 4 fl oz/A. Peut être utilisé jusqu’au jour de la récolte inclusivement.
  • Infuser le Contrôle systémique de la maladie à 2 C. à soupe / gal d’eau. H
  • PropiMax CE à 4 fl oz/A. Ne pas utiliser dans les 10 jours suivant la récolte.
  • Inclinaison à 4 fl oz/A. Ne pas mélanger avec la syllabe. Peut être utilisé jusqu’au jour de la récolte inclus.
• Écraser à 4 oz/A. Ne pas utiliser dans les 14 jours suivant la récolte. Fongicide du groupe 3. rentrée de 12 heures.
• QuiltXcel à 14 fl oz /A. Peut être appliqué le jour de la récolte. Les pulvérisateurs ne doivent pas être utilisés sur les pommes. Fongicide du groupe 3 +11. rentrée de 12 heures.
• Rallye 40 WSP à 2.5 à 6 oz / A. Peut être appliqué jusqu’au jour de la récolte. A une activité éradiquante. Contrôle généralement excellent. Fongicide du groupe 3. rentrée 24 heures.
• Concentré de pulvérisation fongicide Multi-usages Spectracide Immunox pour jardins à 0,5 oz liq/ gal d’eau. Peut être appliqué jusqu’au jour de la récolte inclus. Ne pas utiliser plus de sept (7) fois par an. Fongicide du groupe 3. H
• Soufre 6L (52%) à 5 gal / A. Peut être phytotoxique s’il est appliqué à des températures supérieures à 85 ° F. Contrôle généralement juste. Fongicide du groupe M2. rentrée 24 heures. O
• Syllepse FL à raison de 1,5 à 3 pintes/A plus un autre fongicide. Ne pas utiliser dans les 7 jours suivant la récolte. Fongicide du groupe U12. rentrée 48 heures.
• Produits à base de tébuconazole. Peut être appliqué jusqu’au jour de la récolte inclus. Généralement bon à excellent contrôle. Fongicides du groupe 3.
  • Orius 20 AQ à une rentrée de 8,6 à 17,2 oz/A. 12 heures.
  • Tebucon 45 DF à 4 à 8 oz/A. Rentrée de 5 jours.
  • Unicorn DF à 2 à 3 lb / A. Comprend du soufre dans la formulation. rentrée de 5 jours.
• Topguard à 14 fl oz /A. Ne pas utiliser dans les 7 jours suivant la récolte. Les pulvérisateurs ne doivent pas être utilisés sur les pommes. Fongicide du groupe 3. rentrée de 12 heures.
• EQ Topguard à 6 à 8 fl oz / A. Ne pas utiliser avec des tensioactifs en silicone ou dans les 7 jours suivant la récolte. Les pulvérisateurs ne doivent pas être utilisés sur les pommes. Fongicide du groupe 3 +11. rentrée de 12 heures.
• Topsin 4,5 FL à 22,5 à 30 fl oz/A. Ne pas appliquer dans les 1 jour suivant la récolte. Ce matériau peut tuer les vers de terre, qui aident à décomposer les feuilles infectées. Fongicide du groupe 1. rentrée de 2 jours.
• Trionic 4 SC à 10 à 16 oz liq/A. Ne pas appliquer dans les 1 jour suivant la récolte. Fongicide du groupe 3. rentrée de 12 heures.
• Ziram 76 DF à 5 à 6 lb/A. Ne pas utiliser dans les 30 jours suivant la récolte. Contrôle généralement équitable. Fongicide du groupe M3. rentrée 48 heures.

Remarque Bien qu’efficaces, les produits en cuivre ne sont pas recommandés en raison de la phytotoxicité des fruits.

Certains produits homologués n’offrent que la suppression de cette maladie et ne sont donc pas recommandés. Ces produits incluent Fontelis.

Lutte biologique

• Serenade ASO (souche Bacillus subtilis QST 713) à 2 à 4 litres / A. L’ingrédient actif est une petite protéine. Efficacité inconnue dans le PNW. rentrée de 4 heures. O

Références Green, H., Bengtsson, M., Duval, X., Pedersen, H.L., Hockenhull, J., et Larsen, J. 2006. Influence de l’urée sur l’agent pathogène de la tache de la feuille de cerisier, Blumeriella jaapii, et sur les microorganismes dans les feuilles de cerisier en décomposition. Soil Biology and Biochemistry 38: 2731-2742.

Outwater, C.A., Proffer, T.J., Rothwell, N.L., Peng, J. et Sundin, G.W. 2019. Boscalid Resistance in Blumeriella jaapii: Distribution, Effect on Field Effectiveness, and Molecular Characterization. Maladie des plantes 103: 1112-1118.