2.38.6.1.1 Extracción sólido-Líquido (LES)
El LES es la técnica más simple para extraer compuestos activos biológicos de fuentes naturales. Consiste en la extracción pasiva de los compuestos diana por difusión hacia el disolvente de extracción. Los principales parámetros que pueden afectar al LES son la relación disolvente-materia prima, la temperatura de extracción y la composición del disolvente. En cuanto al último parámetro, los disolventes verdes han mostrado una respuesta muy positiva para la extracción de varios compuestos bioactivos en procedimientos de LES. Las principales aplicaciones de SLE que utilizan disolventes verdes se refieren a la extracción de compuestos fenólicos, aunque estos disolventes también son efectivos para la extracción de otros tipos de bioactivos como carbohidratos y lípidos. En la Tabla 1 se resumen algunos ejemplos de LES de bioactivos que utilizan disolventes verdes publicados en los últimos cinco años.
Tabla 1. Métodos de extracción convencionales con disolventes respetuosos con el medio ambiente
Disolvente | Alimento o ingrediente en estudio | Método de extracción | Técnica de separación/determinación | Aplicación alimentaria | |
---|---|---|---|---|---|
Etanol | Composición fitoquímica de extractos de hojas, flores y frutas de E. elaterium | SLE followed by LLE with ethyl acetate and column chromatography purification (CHCl3/MeOH gradient) | HPLC-MS/MS | Antioxidant and anti-inflammatory activities | Bourebaba et al., 2018 |
Ethanol | Bioactives of green coffee beans and its press meal | Soxhlet 2 g sample 10 g solvent 3h and 5 h |
HPLC-DAD | Antioxidant activity | Resende Oliveira et al., 2019 |
Ethanol 70% | Phenolic compounds from Citrus reticulata peel | SLE 50 g sample 1 L solvent Boiling solvent 60 min |
HPLC-PDA | Anti-proliferative effect against BT-475, HepG2 and Caco-2 human cancer cell lines | Ferreira et al., 2018 |
Ethanol, Water | Polyphenols of Salvia amplexicaulis Lam. | SLE, 10 g sample 100 mL water or 96% EtOH 24 h, RT |
HPLC-DAD | Antioxidant activity and enzyme inhibition (AChE and tyrosinase) | Alimpić et al., 2017 |
Acetato de etilo (EtOAc) | Residuos de plaguicidas en caramelos que contienen productos apícolas | QuEChERS: 1)
SLE, 10 g de muestra + 10 ml de acetato de etilo + 10 mL de agua 2) Limpieza y evaporación de dSPE 3) Preconcentración con EtOAc |
GC-MS | Seguridad alimentaria | Gérez et al. De 2017 |
residuos de Plaguicidas en frutas y verduras | Uclés et al. De 2014 | ||||
Agua | contenido Fitoquímico de Salvia eriophora Boiss. & amp; Kotschy | SLE 20 g sample 200 mL water 12h, RT |
HPLC-MS/MS | Antioxidant activity and enzyme inhibition (acetylcholinesterase, α-amylase, butyrylcholinesterase, α-glycosidase) | Bursal et al., 2019 |
Water | Phenolic compounds from leaves of the kiwi tree | SLE 10 g sample 100 mL water Boiling water 10 min |
HPLC-DAD HRMS |
Cytotoxicity, permeability and protein profile modification of Caco-2 cells | Henriques et al., 2018 |
Agua | Fracción de polisacáridos del hongo Hericio erinaceus | SLE 1 g 15 mL de agua Agua hirviendo 60 min |
FT-IR GC-FID |
Evaluación del impacto de los polisacáridos en la salud del colon | Wang et al., 2018a |
Butanol/metanol (3:1), y heptano/acetato de etilo (3:1) | los Lípidos de los tejidos de los animales | 15-150 mg de tejido congelado 500 µL butanol/MeOH (3:1) + 500 µL de heptano/EtOAc (3:1) + 500 µL de ácido acético 1% + 500 µL de heptano/EtOAc (3:1) |
HPLC-ELSD | Development of chloroform-free extraction method for lipidomics | Löfgren et al., 2016 |
EtOH, ethanol; FT-IR, Fourier transform infrared spectroscopy; GC-FID, gas chromatography coupled to flame ionization detector; HPLC-DAD, high performance liquid chromatography coupled to diode array detector; HPLC-PDA, high performance liquid chromatography coupled to photodiode array detector; HRMS, high resolution mass spectrometry; MeOH, methanol; RT, room temperature; SLE, extracción sólido / líquido.
La extracción de compuestos fenólicos por LES se ha realizado tradicionalmente utilizando metanol, etanol, acetona o mezclas de estos disolventes con agua. Luego se puede realizar un fraccionamiento adicional mediante partición líquida (LLE), generalmente con hexano o acetato de etilo, que puede terminar en una limpieza por SPE o en un fraccionamiento por cromatografía en columna (Ajila et al., 2010). Por ejemplo, este flujo de trabajo tradicional se ha utilizado para obtener extractos enriquecidos en cucurbitacinas y flavonoides a partir de Ecballium elaterium, comenzando con un extracto crudo preparado por LES con etanol al 96% a una relación disolvente / muestra de 20 mL g−1. El fraccionamiento del extracto crudo con acetato de etilo produjo un extracto con actividades antioxidantes y antiinflamatorias (Bourebaba et al., 2018). Sin embargo, este no es el enfoque más respetuoso con el medio ambiente y se recomendaría reemplazarlo por estrategias que conduzcan a la reducción del consumo de disolventes, el tiempo y las etapas de evaporación.
El uso de agua pura es una de las opciones más baratas y fáciles de llevar a cabo el LES. Se utiliza ampliamente para preparar extractos de plantas, alimentos y desechos de alimentos para estudiar su composición química y sus posibles efectos en la salud. La utilización de LES con agua hirviendo es bastante interesante porque emula los procesos que ocurren durante la infusión o decocción de plantas, por lo que la composición de estos extractos debe ser similar al perfil químico de los tés de hierbas consumidos análogos. Además, los extractos de agua de residuos de alimentos con actividad biológica potencial pueden ampliarse fácilmente para la valorización de estos productos. Por otro lado, algunos metabolitos de plantas pueden sufrir hidrólisis durante la extracción o conservación de extractos acuosos y el agua es un buen medio para el crecimiento de bacterias (Belwal et al., 2018). La eliminación de disolventes también es una desventaja, ya que el agua no se evapora fácilmente y la liofilización requiere un alto suministro de energía y consume mucho tiempo; esto es comúnmente un paso requerido, porque los ciclos de congelación y descongelación producidos como consecuencia de la conservación de los extractos a bajas temperaturas pueden degradar los compuestos de interés. Estas desventajas suelen superarse mediante el uso de mezclas de agua con otros disolventes orgánicos.
Buenos ejemplos de aplicación de disolventes verdes para la extracción de compuestos fenólicos activos biológicos son varios estudios que se han publicado recientemente para el LES de compuestos fenólicos de diferentes especies de Salvia. Maceración de Salvia eriophora (Bursal et al., 2019) y Salvia amplexicaulis Lam. (Alimpić et al., 2017) con agua (10 mL g−1) se produjeron extractos prometedores con actividad inhibitoria contra enzimas como la acetilcolinesterasa (AChE), relacionadas con vías neurodegenerativas. Los extractos de agua de diferentes especies de salvia mostraron un perfil fenólico diferente, pero el perfil químico del extracto de etanol de la misma especie fue análogo al acuoso, por lo que el extracto alcohólico también fue bioactivo (Alimpić et al., 2017). En ambos estudios, el metanol también se probó como disolvente, ya que proporciona un alto rendimiento de compuestos fenólicos. El metanol es ligeramente más polar y más barato que el etanol, y es más fácil de evaporar debido a su punto de ebullición más bajo; sin embargo, debido a sus peores características ambientales, el metanol se reemplaza cada vez más por etanol o mezclas de etanol/agua. Sin embargo, a pesar del uso de disolventes verdes, el método de extracción propuesto consume mucho tiempo y puede mejorarse, ya que la extracción propuesta de S. eriophora y S. amplexicaulis Lam. se realizó durante 12 h y 24 h, respectivamente. La extracción bajo reflujo por medio de un extractor Soxhlet puede contribuir a reducir el tiempo necesario para recuperar los compuestos bioactivos de la muestra. Por ejemplo, la extracción de Soxhlet de compuestos bioactivos de granos de café verde con etanol se obtuvo en 5 h (Resende Oliveira et al., 2019).
El uso de etanol, agua y sus mezclas se ha empleado para la recuperación de compuestos fenólicos y flavonoides de subproductos de diferentes industrias alimentarias, con el objetivo principal de valorizar productos que generalmente se consideran residuos. Por ejemplo, el SLE que utiliza etanol al 80% en agua mostró una recuperación eficiente de polifenoles del orujo (piel y semillas) de diferentes variedades de vino tinto en la industria vitivinícola (Makris, 2018). Se utilizó una mezcla de etanol/agua 70:30 (v/v) para la recuperación de compuestos fenólicos de la cáscara de Citrus reticulata Blanco, otro subproducto industrial alimentario. El extracto se obtuvo hirviendo la muestra en el disolvente durante 60 min, con una relación disolvente-muestra de 20 mL g-1. El extracto purificado por SPE presentó actividad antiproliferativa contra las células de carcinoma de mama humano BT-475 (Ferreira et al., 2018). Este enfoque es bastante interesante desde el punto de vista de la Química Verde, ya que la valorización de un subproducto contribuye a la economía circular y la sostenibilidad, y el tiempo de extracción propuesto de 1 h para obtener extractos bioactivos es más viable que los tiempos de maceración que van de 12 h a 24 h. Incluso se propuso un tiempo de extracción más reducido para la recuperación de compuestos fenólicos bioactivos de las hojas de los kiwis (Actinidia deliciosa), considerados como un desperdicio de la industria frutícola. En esta aplicación, se utilizaron 10 min de agua hirviendo en una relación disolvente / muestra de 10 mL g−1, y el paso de LES fue seguido por la precipitación etanólica de las fibras. Se observaron efectos en el perfil proteico y efecto de inhibición sobre la AChE, mostrando el potencial del extracto de agua de este subproducto (Henriques et al., 2018).
Además de los compuestos fenólicos, las combinaciones de agua y etanol se utilizan ampliamente para la extracción convencional de carbohidratos. Por ejemplo, el LES con agua se ha utilizado para la extracción de polisacáridos interesantes del hongo Hericium erinaceus. Se utilizó agua hirviendo (15 mL g−1, 1h, dos veces) para obtener una fracción de polisacáridos en bruto y, después, se obtuvo una fracción de polisacáridos concentrada por precipitación de etanol. Este extracto fue sometido a precipitación proteica y dializado, para obtener un extracto refinado. Estas fracciones se suministraron a ratones por administración oral y se observó una mejora en la salud del colon (Wang et al., 2018c).
De todos los expuestos hasta ahora, se observa fácilmente que los compuestos fenólicos y los carbohidratos son moléculas polares adecuadas para extraerse con agua y etanol, pero se necesitan menos disolventes verdes polares para la extracción de moléculas como carotenoides o lípidos. Estos analitos no polares se han extraído tradicionalmente con mezclas de cloroformo / metanol y su sustitución por disolventes más respetuosos con el medio ambiente para el LES convencional es una tarea difícil. A este respecto, se ha propuesto un método sin cloroformo para la extracción total de lípidos de tejidos animales a base de LES con mezcla de butanol / metanol (3:1) (aprox. 10 µL mg-1) seguido de LLE con ácido acético al 1% y mezcla de heptano / acetato de etilo (3:1) (Löfgren et al., 2016). Este método fue superior a la recuperación de lípidos que el método Folch convencional basado en el uso de mezcla de cloroformo/metanol (2:1), y también mejor que la extracción de lípidos con metil terc-butil éter (MTBE). Sin embargo, no todos los disolventes utilizados en el protocolo propuesto son inocuos para el medio ambiente, aunque se incluye cualquier disolvente clorado.
Finalmente, vale la pena mencionar un ejemplo del uso de LES con disolventes ecológicos en aplicaciones de seguridad alimentaria. En este sentido, el método de extracción más popular para el análisis de residuos de plaguicidas es el llamado método QuEChERS (acrónimo de quick, easy, cheap, effective, rugged and safe), basado en LES seguido de SPE dispersivo (dSPE) para la limpieza de los extractos (http://quechers.cvua-stuttgart.de). Los pesticidas polares generalmente se extraen utilizando acetonitrilo o metanol antes de su análisis mediante cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC), pero se extraen menos pesticidas polares mediante el solvente de acetato de etilo respetuoso con el medio ambiente, análisis previo de cromatografía de gases (GC). Como ejemplos, dos métodos para el análisis de residuos de pesticidas en frutas y verduras (Uclés et al., 2014) y en caramelos (Gérez et al., 2017) se incluyen en la Tabla 1, ambas basadas en extracción de QuEChERS con acetato de etilo.